1999. Revista Chapingo Serie Horticultura 5: 261-265.

 

ESTUDIOS IN VIVO DE Trichoderma COMO AGENTE DE BIOCONTROL CONTRA Phytophthora cinnamomi Y Rosellinia necatrix EN AGUACATE

 

C. J. López-Herrera¹; R. M. Pérez-Jiménez²; A. Llobel³, E. Monte-Vázquez⁴; T. Zea-Bonilla²

¹Estación Experimental La Mayora. C.S.I.C. 29750, Algarrobo-Costa. Málaga. Correo electrónico: clherrera@eelm.csisc.es

²Centro de Investigación y Formación Agraria. 29140, Churriana, Málaga

³Instituto de Bioquímica Vegetal y Fotosíntesis. C.S.I.C.-Universidad de Sevilla.C/ Americo Vespucio s/n, Isla de La Cartuja, 41092, Sevilla

⁴Dpto. Microbiología y Genética. Universidad de Salamanca. Avda. Campo Charro s/n 37007. Salamanca. ESPAÑA.

 

RESUMEN

Las podredumbres radiculares causadas por Phytophthora cinnamomi  y por Rosellinia necatrix son las enfermedades más importantes en el cultivo del aguacate en el sur de España. La incorporación de agentes de control biológico (antagonistas) al suelo, tales como Trichoderma spp., es ampliamente reconocida como método de lucha contra enfermedades causadas por hongos de suelo. Para abordar el control biológico de estas enfermedades se seleccionaron cuatro cepas de Trichoderma que presentaron in vitro un claro efecto antagonista ante los patógenos mencionados. Se inoculó bajo invernadero plantas de aguacate cv. Topa Topa de nueve meses de edad con suspensiones de conidias (1x10⁶ conidias/g suelo) de los distintos aislados de Trichoderma junto con un aislado muy virulento de P. cinnamomi o de R. necatrix. Las plantas evolucionaron durante cuatro meses en los que se realizaron cuantificaciones de la densidad de inóculo de Trichoderma en suelo y se anotó síntomas aéreos de las plantas. Al finalizar el experimento, se determinó la densidad de inóculo de cada patógeno en suelo, el porcentaje de aislamiento de éstos en las raíces y el peso seco de raíces. En general, en las inoculaciones conjuntas patógeno-antagonista, la evolución de las poblaciones en suelo de cada uno de los aislados de Trichoderma fue variable, observándose una mejor colonización del sustrato por determinados aislados como el TB 1.2. En presencia de Trichoderma la densidad de inóculo de P. cinnamomi se redujo entre un 86 y 91% y su porcentaje de aislamiento en las raíces de las plantas inoculadas entre un 40 y 60%. Para R. necatrix, el aislado de Trichoderma TB1.2 fue el único que resultó efectivo reduciendo el porcentaje de aislamiento del patógeno en las raíces de las plantas inoculadas un 37%.

Palabras clave: Persea americana, hongos de suelo patógenos, microorganismo antagonista, control biológico

 

SUMMARY

The avocado root rots caused by Phytophthora cinnamomi and Rosellinia necatrix are the most important diseases of avocado trees in southern Spain. The incorporation of biocontrol agents (antagonistics) to the soil, such as Trichoderma spp., it is being widely accepted as method to control soilborne diseases. With this objective, four Trichoderma isolates, that presented in vitro a clear antagonistic effect to the cited pathogens, were previously selected. Nine months old avocado plants of cv. Topa Topa, were inoculated with conidial suspensions (1x10⁶ conidias/g soil) of the different Trichoderma isolates together with a virulent isolate of P. cinnamomi or R. necatrix. The plants evolved during four months, in this period quantifications  of the Trichoderma inoculum density and aerial symptoms of the plants were carried out. At the end of the experiment, inoculums density of each pathogen in soil, isolation percentage of these pathogens in the roots and dry weight of the roots were determined. In general, in the pathogen-antagonistic combined inoculations, the evolution of the populations in soil of each one of the isolates of Trichoderma was variable, although a better colonization of the substrate by the isolate TB 1.2 was observed. In all treatments with Trichoderma inoculums density of P. cinnamomi was reduced between 86 and 91%, and its isolation percentages in the roots of the plants between 40 and 60%. For R. necatrix, the isolate of Trichoderma TB1.2 was the only one effective in reducing up to 37% the percentage of isolation of the pathogen in the roots of the inoculated plants.

Key words: Persea americana, soilborne pathogen, antagonnistic microorganism, biologiacal control

 

INTRODUCCIÓN

El cultivo del aguacate está muy extendido en el litoral andaluz (sur de España), ocupando una superficie total en la península del orden de 8.000 Has y con una producción de 62.000 Tm en 1998 (Anónimo, 1999). Las podredumbres radiculares del aguacate causadas por  Rosellinia necatrix y Phytophthora cinnamomi son las enfermedades  más importantes del cultivo del aguacate en esta zona (López Herrera y García Rodriguez, 1987; López Herrera, 1989).

Los problemas y limitaciones del control de enfermedades fúngicas mediante el uso de fungicidas hacen que el control biológico de los hongos fitopatógenos se presente como un método de control alternativo. En este sentido, el control de P. cinnamomi y R. necatrix mediante la incorporación al suelo de los denominados agentes de control biológico ha sido abordado por distintos autores. Así, se ha puesto de manifiesto que bacterias presentes en suelo, tales como Pseudomonas spp. y Streptomyces spp., inhiben el crecimiento de P. cinnamomi in vitro  (Mass y Kotzé, 1990; Finlay y McCracken, 1991; Stirling et al., 1992). Igualmente, existe un gran número de especies fúngicas que manifiestan efecto antagonista hacia P. cinnamomi tales como Trichoderma spp., Myrothecium roridum, Aspergillus spp., o Paecilomyces spp. (Reeves, 1975; Gees y Coffey, 1989; Casale, 1990; Finlay y McCracken, 1991; Duvenhage y Kotzé, 1993; McLeod et al., 1995).

Existen distintas especies de bacterias de los géneros Agrobacterium y Pseudomonas aisladas de suelo y de raíces de melocotonero y manzano que presentan un acusado efecto antagonista hacia R. necatrix (Yasuda y Katoh, 1989). Adicionalmente, se ha obtenido control de R. necatrix por Trichoderma  harzianum y  Sordaria spp. (Freeman et al., 1986; Watanabe, 1991). Sin embargo, otros autores encuentran que la incorporación de Trichoderma en campo no es efectiva, pudiendo deberse esto a una aplicación inadecuada del antagonista (Sztejnberg et al., 1987).

En este trabajo se ha abordado el control biológico de estos hongos in vivo mediante la incorporación al suelo de distintos aislados de Trichoderma junto con aislados de P. cinnamomi y R. necatrix obtenidos de plantaciones aguacateras del sur de España.

MATERIALES Y MÉTODOS

Se utilizaron plantas de aguacate de semilla cv. Topa Topa con nueve meses de edad sembradas en bolsas de 2.5 litros con un sustrato mezcla de turba:arena:tierra (2:1:1) desinfectado con bromuro de metilo. Las plantas se inocularon con un aislado muy virulento de P. cinnamomi  (Pc-273) o de R. necatrix (Rn-400) y de forma simultánea  con un aislado de Trichoderma. Los aislados de Trichoderma ensayados (T6: Trichoderma aureoviride, T9 y T10: Trichoderma longibrachiatum  y TB1.2 Trichoderma harzianum) se seleccionaron previamente in vitro por su capacidad para antagonizar a estos patógenos (Soler et al., 1998). La inoculación se realizó incorporando al suelo una suspensión de 10⁶ conidias del antagonista/g de sustrato y de 2.5 g de semillas de trigo colonizadas con P. cinnamomii por kg de sustrato (Zentmyer y Richards, 1952)  o de 1 g de semillas colonizadas con R. necatrix por kg de sustrato (Sztejnberg et al., 1987). Se  consideraron 15 tratamientos distintos con 20 repeticiones cada uno: Plantas testigo no inoculadas (T), plantas inoculadas con cada uno de los patógenos (Pc, Rn), plantas inoculadas con cada Trichoderma (T6, T9, T10, TB1.2) y plantas inoculadas con cada patógeno y cada Trichoderma (Pc+T6, Pc+T9, Pc+T10, Pc+TB1.2, Rn+T6, Rn+T9, Rn+T10, Rn+TB1.2).

La duración del experimento fue de cuatro meses, realizándose durante su desarrollo las siguientes determinaciones: a) cuantificación de Trichoderma spp., en suelo de las plantas inoculadas, a las 1, 4, 8, 12 y 16 semanas desde la inoculación mediante el método de diluciones seriadas con TSM descrito por Askew y Laing (1993), b) evolución a lo largo del experimento del número de plantas muertas, c) cálculo del incremento de altura de cada planta al final del experimento, d) evaluación del estado del sistema radicular de las plantas al finalizar el experimento determinando el peso seco de raíces y la frecuencia de aislamiento de los patógenos en 10 trozos de raíz por planta  elegidos al azar y e) determinación de la densidad de inóculo de cada patógeno en el suelo para cada tratamiento. P. cinnamomi se cuantificó siguiendo el método de Gees y Coffey (1989) y R. necatrix según el método puesto a punto en nuestro laboratorio para las inoculaciones de invernadero: el sustrato infestado se deja secar a temperatura ambiente; posteriormente se tritura y tamiza y se extiende en bandejas donde se riega a capacidad de campo, éstas se sellan con lámina de plástico negra y se incuban en oscuridad a 24 ^oC. A  los 7 y 14 días se realizan lecturas del número de colonias de R. necatrix crecidas sobre el sustrato.

RESULTADOS

En general, la densidad de inóculo de los distintos aislados de Trichoderma se presentó similar en los tratamientos con patógeno y sin patógeno. Por otro lado, se observó una reducción de la densidad de inóculo de los distintos aislados de Trichoderma  entre el inicio del experimento y la cuarta semana de la inoculación.  En posteriores cuantificaciones el aislado T9  mantuvo sus niveles  por debajo de 60.000 ufc por g  suelo y el T6 y T10 entre 100.000 y 200.000 ufc por g suelo, mientras que el aislado TB1.2 destacó por mantener su población en torno a las 400.000 ufc por g suelo hasta la última cuantificación (Figura 1).

Los efectos de la aplicación de los diferentes aislados de Trichoderma  en las plantas de aguacate inoculadas con P. cinnamomi quedan reflejadas en el Cuadro 1. Durante el experimento no se produjo muerte en las plantas inoculadas con P. cinnamomi. No se encontró diferencias significativas en el incremento de altura de las plantas. El peso seco de raíz de las plantas inoculadas solo con P. cinnamomi  resultó similar al de las plantas inoculadas con P. cinnamomi y Trichoderma, excepto para el aislado T9 que se diferenció claramente del resto. En presencia de Trichoderma, el porcentaje de aislamiento del patógeno de raíces siempre fue menor que en el tratamiento sin antagonista.  Al finalizar el experimento, se encontró que la densidad de inóculo del patógeno en los tratamiento con Trichoderma se redujo significativamente con respecto al tratamiento con P. cinnamomi.

El efecto de la aplicación de aislados de Trichoderma  en las plantas inoculadas con R. necatrix se refleja en el Cuadro 2. La muerte de plantas en los tratamientos R. necatrix y  Trichoderma fue igual a la encontrada en las plantas inoculadas solo con R. necatrix. Al igual que para P. cinnamomi, no se pudo establecer diferencias significativas en el incremento de altura de las plantas. El peso seco de las raíces de las plantas inoculadas con R. necatrix y Trichoderma spp. no se diferenció de las inoculadas solo con el patógeno, aunque sí se observó un desarrollo significativo de raíces en presencia solo de Trichoderma. Tampoco se observó diferencias en cuanto al porcentaje de aislamiento del patógeno en las raíces de las plantas inoculadas con el patógeno y las inoculadas con patógeno y antagonista, excepto para la combinación Rn+TB1.2 que presentó un significativo menor aislamiento del patógeno.

DISCUSIÓN

Los aislados de Trichoderma ensayados demostraron un claro efecto antagonista contra P. cinnamomi  y R. necatrix  en los cultivos duales realizados previamente in vitro (Soler et al., 1998), sin embargo, los resultados de control de estos patógenos con el antagonista en plantas inoculadas de invernadero no han sido tan satisfactorios. Se confirma lo observado por otros autores (McLeod et al., 1995; Smith et al., 1990) respecto a que la selección previa de antagonistas mediante cultivos duales es útil, pero no garantiza el buen comportamiento de éstos en invernadero.

En cuanto al establecimiento y evolución de la población de Trichoderma en suelo, la reducción inicial observada en la densidad de inóculo para todos los aislados concuerda con los resultados obtenidos por McLeod et al. (1995) quienes, en sus evaluaciones de P. cinnamomi con aislados de Trichoderma, indican que esta reducción drástica puede deberse  a que el antagonista utiliza su energía en la producción de metabolitos secundarios más que en su propia reproducción.

Al finalizar el experimento, la población de R. necatrix en el suelo en el tratamiento Rn fue similar a la encontrada en presencia de los distintos aislados de Trichoderma.

 

Figura 1.  Evolución de la densidad de inóculo (ufc/g suelo) de aislados de Trichoderma (T6, T9, T10 y TB1.2) inoculados con Phytophthora cinnamomi (Pc) o Rosellinia necatrix  (Rn).

 

 

 

 

 

El aumento de vigor observado en las plantas inoculadas sólo con el antagonista, reflejado en el peso seco de raíces, coincide con lo encontrado por otros autores (Chang et al., 1986; Windham et al., 1986; Smith et al., 1990), quienes indican que este efecto puede deberse a una eliminación de patógenos menores de la rizosfera o a la existencia de un factor liberado por especies de Trichoderma que regule el crecimiento de las plantas. Igualmente, se confirma que esta estimulación del crecimiento es independiente del efecto del antagonista en el control de los hongos de suelo.

Por otro lado, se encontró que la densidad de inóculo de Trichoderma en el suelo no está siempre directamente relacionada con su acción antagonista. Así, en el caso de P. cinnamomi, resultó que las plantas inoculadas con el aislado del antagonista que mantuvo niveles más bajos de inóculo (T9) fueron las que presentaron mayor peso seco de raíces. En cambio, para R. necatrix, las plantas inoculadas con el aislado TB1.2, que mantuvo durante todo el experimento una densidad de inóculo alta,  presentaron menor aislamiento del patógeno en sus raíces.

Este trabajo pone de manifiesto que la incorporación de aislados de Trichoderma al suelo para el control de las podredumbres radiculares del aguacate puede ser efectiva,  pero que require de trabajos posteriores de investigación que clarifiquen los mecanismos de interacción patógeno-antagonista específicos en cada una de las enfermedades estudiadas.

LITERATURA CITADA

ANÓNIMO. 1999. Boletín de Información Agraria y Pesquera 136:19. Junta de Andalucía.

ASKEW, D.J.; LAING, M.D. 1993. An adapted selective medium for the quantitative isolation of Trichoderma species. Plant Pathology 42:686-690.

CASALE, W. L. 1990. Analysis of suppressive soils and development of biological control methods for Phytophthora root rot of avocado. California Avocado Society Yearbook 74:53-56.

CHANG, Y.; CHANG, Y.; BAKER, R.; KLEIFELD, O.; CHET, I. 1986. Incresased growth of plants in the presence of the biological control agent Trichoderma harzianum. Plant Disease 70:145-148.

DUVENHAGE, J.A.; KOTZÉ, J.M. 1993. Biocontrol of root rot of avocado seedlings. South African Avocado Growers' Association Yearbook 16: 70-72.

FINLAY, A.R.; y McCRACKEN, A.R. 1991. Microbial suppression of Phytophthora cinnamomi, pp. 383-398. In: Phytophthora. Lucas J. A., Hattock, R. C., Shaw, D. S., Cooke, L. R., eds., Cambridge Univ. Press, Cambridge.

FREEMAN, S.; SZTEJNBERG, A.; CHET, I. 1986. Evaluation of Trichoderma as a biocontrol agent for Rosellinia necatrix. Plant and Soil 94: 163-170.

GEES, R.; y COFFEY, M.D. 1989. Evaluation of strain of Myrothecium roridum as a potencial biocontrol agent against Phytophthora cinnamomi. Phytopathology 79(10): 1079-1084.

LÓPEZ H., C.J; GARCÍA R., J.C. 1987. Survey of soil fungi associated with avocado crops in Southern Mediterranean coast of Spain  (Málaga-Granada). In: Proceedings of 7^th Congress of the Mediterranean Phytopathological Union , 1987. Granada, Spain. Consejería de Agricultura y Pesca  de la Junta de Andalucía, pp.189-190.

LÓPEZ H., C.J. 1989. Podredumbres radiculares del agucacte en la Costa del Sol. Años 1987-1988, pp 172-176. In: Estudios de Fitopatología. J. Del moral, (ed.) S.E.F./D.G.I.E.A. Badajoz, Spain.

MASS, E.M.C.; KOTZÉ, J.M. 1990. The effect of bacteria on root severity aused by Phytophthora cinnamomi. South African Avocado Growers' Association Yearbook 13: 65-66.

MCLEOD, A.; LABUSCHAGNE, N.; y KOTZÉ, J.M. 1995.  Evaluation of Trichoderma for biological control of avocado root rot in bark medium artificially infested with Phytophthora cinnamomi. South African Avocado Growers´ Association Yearbook 18: 32-37.

REEVES, R.J. 1975. Behaviour of Phytophthora cinnamomi Rands in different soils and water regimes. Soil Bioloogy & Biochemistry 7: 19-24.

SOLER, A.; GRONDONA, I.; MONTERO, M.; LÓPEZ H., C.J.; LLOBELL, A.; MONTE, E. 1998. Selección de cepas de Trichoderma antagonistas de              Phytophthora cinnamomi y Rosellinia necatrix para su aplicación en cultivos de     aguacate. Programa y resúmenes del IX Congreso de la Sociedad Española de      Fitopatología. Salamanca, España. p. 285.

SMITH,  V.L.; WILCOX, W.F.; y  HARMAN, G.E. 1990. Potential for biological control of Phytophthora root and crown rots of apple by Trichoderma and Gliocladium spp. Phytopathology 80: 880-885.

STIRLING, A.M.; HAYWARD, A.C.; PEGG, K.G. 1992. Evaluation of the biological control potencial of bacteria isolated from soil supressive to Phytophthora cinnamomi. Australasian Plant Pathology 21(4): 133-142.

SZTEJNBERG, A.; FREEMAN, S.; CHET, I.; KATAN, J. 1987. Control of Rosellinia necatrix in soil and apple orchard by solarization and Trichoderma harziarum. Plant Disease 71(4): 365-369.

WATANABE, T. 1991. Evaluation of Sordaria spp. as biocontrol agents against soilborne plant disease caused by Pythium aphanidermatum and Dematophora necatrix. Annals of the Phytopathological Society of Japan 57(5): 680-687.

 WINDHAM, M.T.; ELAD, Y.; BAKER, R. 1986. A mechanism for increased plant growth induced by Trichoderma spp. Phytopathology 76: 518-521.

YASUDA, M.;  KATOH, K. 1989. Characteristics of bacteria isolated from soil and roots of fruit trees. Soil Science and Plant Nutrition 35(4): 501-508.

ZENTMYER, G.A.; RICHARDS, S.J. 1952. Pathogenicity of Phytophthora cinnamomi to avocado trees, and the effect of irrigation on disease development. Phytopathology 42: 35-37.